تعطيل الجينات

تُعدّ تقنية تعطيل الجينات (المعروفة أيضًا باسم حذف الجينات أو تعطيلها ) تقنيةً شائعة الاستخدام في الهندسة الوراثية، وتتضمن إزالة أو تعطيل جين مُحدد داخل جينوم الكائن الحي. ويمكن تحقيق ذلك من خلال مجموعة متنوعة من الطرق، بما في ذلك إعادة التركيب المتماثل ، وتقنية كريسبر-كاس9 ، وتقنية تالين .

من أهم مزايا تعطيل الجينات أنها تتيح للباحثين دراسة وظيفة جين معين داخل الكائن الحي، وفهم دوره في النمو الطبيعي والوظائف الفسيولوجية، وكذلك في مسببات الأمراض. ومن خلال دراسة النمط الظاهري للكائن الحي الذي تم تعطيل جينه، يستطيع الباحثون اكتساب فهم أعمق للعمليات البيولوجية التي يشارك فيها هذا الجين.

يوجد نوعان رئيسيان من تعطيل الجينات: تعطيل كامل وتعطيل مشروط. يؤدي التعطيل الكامل للجين إلى تعطيله بشكل دائم، بينما يسمح التعطيل المشروط بتفعيل الجين أو تعطيله في أوقات محددة أو في أنسجة معينة. يُعد التعطيل المشروط مفيدًا بشكل خاص لدراسة عمليات النمو وفهم دور الجين في أنواع خلايا أو أنسجة محددة.

استُخدمت تقنية تعطيل الجينات على نطاق واسع في العديد من الكائنات الحية المختلفة، بما في ذلك البكتيريا والخميرة وسمك الزيبرا وذبابة الفاكهة والفئران . وفي الفئران ، تُستخدم هذه التقنية بشكل شائع لدراسة وظيفة جينات محددة في النمو والتطور، وعلم وظائف الأعضاء، وأبحاث السرطان .

كان استخدام تقنية تعطيل الجينات في نماذج الفئران ذا قيمة خاصة في دراسة الأمراض البشرية. فعلى سبيل المثال، استُخدمت هذه التقنية في الفئران لدراسة دور جينات محددة في السرطان، والاضطرابات العصبية، واضطرابات المناعة، واضطرابات التمثيل الغذائي.

مع ذلك، فإنّ تعطيل الجينات له بعض القيود. فعلى سبيل المثال، قد لا يُحاكي فقدان جين واحد تمامًا آثار الاضطراب الوراثي، وقد يكون لتعطيل الجينات آثار غير مقصودة على جينات أو مسارات أخرى. إضافةً إلى ذلك، لا يُعدّ تعطيل الجينات دائمًا نموذجًا جيدًا للأمراض البشرية، لأنّ جينوم الفأر ليس مطابقًا لجينوم الإنسان، كما أنّ فسيولوجيا الفأر تختلف عن فسيولوجيا الإنسان.

تقنية الإقصاء الجيني (KO) هي عكس تقنية إدخال الجينات (knock-in ). يُعرف إقصاء جينين في الكائن الحي في آنٍ واحد بالإقصاء الجيني المزدوج ( DKO ). وبالمثل ، يُستخدم مصطلحا الإقصاء الجيني الثلاثي ( TKO ) والإقصاء الجيني الرباعي ( QKO ) لوصف إقصاء ثلاثة أو أربعة جينات، على التوالي. مع ذلك، يجب التمييز بين الإقصاء الجيني غير المتجانس والإقصاء الجيني المتجانس . ففي الأول، يُقصى أحد نسختي الجين ( الأليلين ) فقط، بينما في الثاني يُقصى كلاهما.

طُرق

يتم تحقيق عمليات تعطيل الجينات من خلال مجموعة متنوعة من التقنيات. في الأصل، تم تحديد الطفرات التي تحدث بشكل طبيعي ، ثم كان لا بد من إثبات فقدان الجين أو تعطيله عن طريق تسلسل الحمض النووي أو طرق أخرى. [ 1 ]

يظهر في الصورة فأر مختبر تم فيه تعطيل جين يؤثر على نمو الشعر (على اليسار)، بجانب فأر مختبر طبيعي.

تعطيل الجينات عن طريق الطفرة

يُعدّ تعطيل الجينات عن طريق الطفرات إجراءً شائعًا في البكتيريا. وقد نُشرت دراسة مبكرة لاستخدام هذه التقنية في بكتيريا الإشريكية القولونية عام 1989 من قِبل هاميلتون وآخرون [ 2 ] . في هذه التجربة، استُخدمت عمليتا إعادة تركيب متتاليتان لحذف الجين. وقد أثبت هذا العمل إمكانية إزالة أو استبدال جين وظيفي في البكتيريا. ومنذ ذلك الحين، طُوّرت هذه الطريقة لتشمل كائنات حية أخرى، ولا سيما حيوانات التجارب، مثل الفئران. تُستخدم الفئران المُعدّلة وراثيًا بشكل شائع لدراسة الجينات التي لها نظائر بشرية والتي قد تكون ذات أهمية في الأمراض. ومن الأمثلة على الدراسات التي تستخدم هذه الفئران، دراسة أدوار بروتينات Xirp في متلازمة الموت الليلي المفاجئ غير المبرر (SUNDS) ومتلازمة بروجادا لدى سكان الهان الصينيين [ 3 ] .

إسكات الجينات

في دراسات تعطيل الجينات، اكتسبت تقنية التداخل الرناوي (RNAi)، وهي طريقة أحدث تُعرف أيضًا باسم إسكات الجينات، شعبيةً واسعة. في هذه التقنية، يُعطَّل الرنا المرسال لجين معين باستخدام الرنا المتداخل الصغير (siRNA) أو الرنا الحلقي القصير (shRNA). يؤدي هذا إلى منع التعبير عن الجين بشكل فعال. وقد استُهدفت جينات ورمية مثل bcl-2 و p53 ، بالإضافة إلى جينات مرتبطة بأمراض عصبية واضطرابات وراثية وعدوى فيروسية، لإسكات الجينات باستخدام تقنية التداخل الرناوي (RNAi). [ 4 ]

إعادة التركيب المتماثل

إعادة التركيب المتماثل هي عملية تبادل الجينات بين سلسلتي الحمض النووي DNA، وتتضمن مناطق واسعة من تسلسلات القواعد المتطابقة. في الكائنات حقيقية النواة، والبكتيريا، وبعض الفيروسات، تحدث إعادة التركيب المتماثل تلقائيًا، وهي أداة مفيدة في الهندسة الوراثية. تحدث إعادة التركيب المتماثل أثناء الانقسام الاختزالي في حقيقيات النوى، وهي ضرورية لإصلاح كسور الحمض النووي DNA المزدوجة، وتعزز التنوع الجيني من خلال السماح بانتقال المعلومات الوراثية أثناء عبور الكروموسومات. تُعد إعادة التركيب المتماثل آلية رئيسية لإصلاح الحمض النووي DNA في البكتيريا، حيث تُمكّن من إدخال المادة الوراثية المكتسبة من خلال النقل الأفقي للجينات وتحويلها إلى DNA. تؤثر إعادة التركيب المتماثل في الفيروسات على مسار تطورها. تُعد إعادة التركيب المتماثل نوعًا من أنواع استهداف الجينات المستخدمة في الهندسة الوراثية، وتتضمن إدخال طفرة مُهندسة في جين معين بهدف فهم وظيفته بشكل أفضل. تتضمن هذه الطريقة إدخال حمض نووي غريب إلى خلية، يحمل تسلسلًا مشابهًا للجين المستهدف، ومحاطًا بتسلسلات متطابقة في اتجاهي 5' و3' من الجين المستهدف. يُستبدل الحمض النووي للجين المستهدف بتسلسل الحمض النووي الغريب أثناء التضاعف، عندما تكتشف الخلية المناطق المجاورة المتشابهة باعتبارها متماثلة. يؤدي هذا الاستبدال إلى تعطيل الجين المستهدف. باستخدام هذه التقنية لاستهداف أليلات معينة في الخلايا الجذعية الجنينية للفئران، يُمكن إنتاج فئران معدلة وراثيًا. بفضل استهداف الجينات، تم تعطيل العديد من جينات الفئران، مما أدى إلى إنشاء مئات النماذج المختلفة من الفئران لأمراض بشرية متنوعة، مثل السرطان والسكري وأمراض القلب والأوعية الدموية والاضطرابات العصبية. أجرى ماريو كابيكي والسير مارتن ج. إيفانز وأوليفر سميثيز أبحاثًا رائدة حول إعادة التركيب المتماثل في الخلايا الجذعية للفئران، وتقاسموا جائزة نوبل في الطب أو علم وظائف الأعضاء لعام 2007 تقديرًا لاكتشافاتهم. [ 5 ] تقليديًا، كان إعادة التركيب المتماثل الطريقة الرئيسية لإحداث تعطيل جيني. تتضمن هذه الطريقة إنشاء بنية DNA تحتوي على الطفرة المطلوبة. ولأغراض التعطيل الجيني، يتضمن ذلك عادةً استبدال جين التعطيل بعلامة مقاومة دوائية. [ 6 ] تحتوي البنية أيضًا على ما لا يقل عن 2 كيلوبايت من التماثل مع التسلسل المستهدف. يمكن إيصال البنية إلى الخلايا الجذعية إما عن طريق الحقن المجهري أو التثقيب الكهربائي . تعتمد هذه الطريقة بعد ذلك على آليات إصلاح الخلية لإعادة تركيب بنية DNA في DNA الموجود. ينتج عن ذلك تغيير في تسلسل الجين، وفي معظم الحالات تتم ترجمة الجين.يتحول إلى بروتين غير وظيفي ، إن تُرجم أصلاً. مع ذلك، تُعد هذه العملية غير فعالة، إذ لا يُمثل إعادة التركيب المتماثل سوى 10⁻² إلى 10⁻³ من عمليات دمج الحمض النووي. [ 6 ] [ 7 ] غالبًا ما يُستخدم واسم اختيار الدواء الموجود على التركيب لاختيار الخلايا التي حدثت فيها عملية إعادة التركيب.

نباتات فيزكوميتريلا البرية والطحالب المُعدّلة جينيًا: أنماط ظاهرية مُختلفة ناتجة عن تحويلات مكتبة تعطيل الجينات. زُرعت نباتات فيزكوميتريلا البرية والمُحوّلة على وسط كنوب المُخفّف لتحفيز تمايز وتطور الأمشاج . لكل نبات، تظهر صورة عامة (الصف العلوي؛ مقياس الرسم 1 مم) وصورة مُكبّرة (الصف السفلي؛ مقياس الرسم 0.5 مم). أ: نبات طحلب بري أحادي الصيغة الصبغية مُغطّى بالكامل بأمشاج ورقية، وصورة مُكبّرة لورقة من النوع البري. ب-هـ: طفرات مُختلفة. [ 8 ]

يمكن استخدام هذه الخلايا الجذعية التي تفتقر الآن إلى الجين في الكائنات الحية ، على سبيل المثال في الفئران، عن طريق إدخالها في الأجنة في مراحلها المبكرة. إذا احتوى الفأر الهجين الناتج على التغيير الجيني في خطه الجرثومي، فيمكن توريثه للنسل. [ 6 ]

في الكائنات ثنائية المجموعة الكروموسومية ، التي تحتوي على أليلين لمعظم الجينات، وقد تحتوي أيضًا على عدة جينات مترابطة تتعاون في نفس الدور، تُجرى جولات إضافية من التحويل والاختيار حتى يتم تعطيل كل جين مستهدف. وقد يتطلب الأمر تربية انتقائية لإنتاج حيوانات متماثلة الزيجوت معطلة الجينات.

النيوكليازات الخاصة بمواقع محددة

طفرة إزاحة الإطار الناتجة عن حذف زوج قاعدي واحد، مما يؤدي إلى تغيير تسلسل الأحماض الأمينية وكودون توقف مبكر.

توجد حاليًا ثلاث طرق مستخدمة تتضمن استهداف تسلسل الحمض النووي بدقة لإحداث كسر في سلسلتي الحمض النووي. بمجرد حدوث ذلك، تحاول آليات إصلاح الخلية إصلاح هذا الكسر، غالبًا من خلال الربط غير المتجانس للنهايات (NHEJ)، والذي يتضمن ربط طرفي القطع معًا مباشرةً. [ 7 ] قد لا تتم هذه العملية بشكل كامل، مما قد يؤدي أحيانًا إلى إدخال أو حذف أزواج من القواعد، والتي بدورها تُسبب طفرات إزاحة الإطار . يمكن لهذه الطفرات أن تجعل الجين الذي تحدث فيه غير وظيفي، مما يؤدي إلى تعطيل هذا الجين. تُعد هذه العملية أكثر كفاءة من إعادة التركيب المتماثل، وبالتالي يمكن استخدامها بسهولة أكبر لإنشاء حالات تعطيل ثنائية الأليل. [ 7 ]

أصابع الزنك

تتكون نوكليازات أصابع الزنك من نطاقات ارتباط بالحمض النووي قادرة على استهداف تسلسل الحمض النووي بدقة. [ 7 ] يستطيع كل إصبع زنك التعرف على الكودونات في تسلسل الحمض النووي المطلوب، وبالتالي يمكن تجميعها بشكل معياري للارتباط بتسلسل معين. [ 9 ] ترتبط نطاقات الارتباط هذه بإنزيم نوكلياز داخلي مُقيد قادر على إحداث كسر مزدوج السلسلة (DSB) في الحمض النووي. [ 7 ] قد تُدخل عمليات الإصلاح طفرات تُعطل وظيفة الجين. [ 10 ]

تالينز

تحتوي النيوكليازات المؤثرة الشبيهة بمنشطات النسخ ( TALENs ) أيضًا على نطاق ارتباط بالحمض النووي ونيوكلياز قادر على قطع الحمض النووي. [ 11 ] تتكون منطقة ارتباط الحمض النووي من تكرارات للأحماض الأمينية، يتعرف كل منها على زوج قاعدي واحد من تسلسل الحمض النووي المستهدف. [ 9 ] إذا استهدف هذا القطع منطقة ترميز جينية، وأدى إصلاح الحمض النووي بواسطة NHEJ إلى إدخالات وحذف، فغالبًا ما ينتج عن ذلك طفرة إزاحة الإطار، مما يعطل وظيفة الجين. [ 11 ]

كريسبر/كاس9

تقنية كريسبر (CRISPR) هي تقنية هندسة وراثية تسمح بتعديل الجينوم بدقة. ومن تطبيقاتها تعطيل الجينات، والذي يتضمن تعطيل أو "إزالة" جين معين في الكائن الحي. [ 12 ]

تتضمن عملية تعطيل الجينات باستخدام تقنية كريسبر ثلاث خطوات رئيسية: تصميم جزيء الحمض النووي الريبوزي الدليل (gRNA) الذي يستهدف موقعًا محددًا في الجينوم، وإيصال جزيء الحمض النووي الريبوزي الدليل وإنزيم Cas9 (الذي يعمل كمقص جزيئي) إلى الخلية المستهدفة، ثم السماح للخلية بإصلاح القطع في الحمض النووي. عند إصلاح الخلية للقطع، يمكنها إما إعادة وصل طرفي القطع معًا، مما ينتج عنه جين غير وظيفي، أو إدخال طفرة تعطل وظيفة الجين.

يمكن استخدام هذه التقنية في مجموعة متنوعة من الكائنات الحية، بما في ذلك البكتيريا والخميرة والنباتات والحيوانات ، وهي تُمكّن العلماء من دراسة وظيفة جينات محددة من خلال مراقبة آثار غيابها. يُعدّ تعطيل الجينات بتقنية كريسبر أداةً فعّالة لفهم الأساس الجيني للأمراض وتطوير علاجات جديدة.

إن تقنية تعطيل الجينات باستخدام كريسبر، كغيرها من تقنيات الهندسة الوراثية، قد تُسبب آثارًا غير مقصودة أو ضارة على الكائن الحي، لذا ينبغي استخدامها بحذر. [ 9 ] [ 13 ] يُحدث إنزيم Cas9 المُقترن قطعًا مزدوجًا في الحمض النووي. [ 9 ] وباتباع المبدأ نفسه المُتبع في تقنيات الزنك فينجر وتالين، غالبًا ما تُؤدي محاولات إصلاح هذه القطع المزدوجة إلى طفرات إزاحة الإطار، مما ينتج عنه جين غير وظيفي. [ 9 ] وقد نجحت تقنية كريسبر-كاس9 غير الجراحية في تعطيل جين مرتبط بالاكتئاب والقلق لدى الفئران، لتكون بذلك أول تقنية ناجحة تخترق الحاجز الدموي الدماغي لتمكين تعديل الجينات. [ 14 ]

طرق

إن إدخال الجينات يشبه حذف الجينات، ولكنه يستبدل جيناً بآخر بدلاً من حذفه.

الأنواع

الضربات القاضية المشروطة

يُتيح تعطيل الجين المشروط حذف الجين في نسيجٍ ما بطريقةٍ خاصةٍ به. ويُعدّ هذا الإجراء ضروريًا بدلًا من تعطيل الجين بشكلٍ كاملٍ إذا كانت الطفرة الصفرية ستؤدي إلى موت الجنين ، [ 15 ] أو إذا كان نسيجٌ أو نوعٌ خلويٌ مُحددٌ ذا أهميةٍ خاصة. ويتم ذلك عن طريق إدخال تسلسلاتٍ قصيرةٍ تُسمى مواقع loxP حول الجين. تُدخل هذه التسلسلات إلى الخلايا الجرثومية عبر نفس آلية تعطيل الجين. بعد ذلك، يُمكن تهجين هذه الخلايا الجرثومية مع خلايا جرثومية أخرى تحتوي على إنزيم Cre-recombinase ، وهو إنزيمٌ فيروسيٌّ قادرٌ على التعرّف على هذه التسلسلات، وإعادة تركيبها، وحذف الجين المُحاط بهذه المواقع. [ 16 ] وقد تم تطوير أنواعٍ أخرى من إنزيمات إعادة التركيب واستخدامها في تجارب تعطيل الجين المشروط. [ 17 ]

يستخدم

فأر معدل وراثيًا (يسار) يمثل نموذجًا للسمنة، مقارنةً بفأر طبيعي

تُستخدم عمليات تعطيل الجينات بشكل أساسي لفهم دور جين معين أو منطقة معينة من الحمض النووي من خلال مقارنة الكائن الحي المعطل جينياً بالكائن البري ذي الخلفية الجينية المماثلة . [ 18 ]

تُستخدم الكائنات المعدلة وراثيًا أيضًا كأدوات فحص في تطوير الأدوية ، لاستهداف عمليات بيولوجية محددة أو أوجه قصور باستخدام حذف جيني محدد، أو لفهم آلية عمل دواء ما باستخدام مكتبة من الكائنات المعدلة وراثيًا التي تغطي الجينوم بأكمله ، كما هو الحال في الخميرة Saccharomyces cerevisiae . [ 19 ]

انظر أيضاً

مراجع

  1. غريفيثز إيه جيه، ميلر جيه إتش، سوزوكي دي تي، ليونتين دبليو سي، جيلبارت دبليو إم (2000). مقدمة في التحليل الجيني (الطبعة السابعة  ). نيويورك: دبليو إتش فريمان. ISBN 978-0-7167-3771-1.
  2. هاميلتون سي إم، ألديا إم، واشبورن بي كيه، بابيتزكي بي، كوشنر إس آر (سبتمبر 1989). "طريقة جديدة لإحداث حذف واستبدال الجينات في الإشريكية القولونية " . مجلة علم البكتيريا . 171 (9): 4617-4622 . doi : 10.1128 / jb.171.9.4617-4622.1989 . PMC 210259. PMID 2548993 .  
  3. هوانغ، لي؛ وآخرون . (يناير 2018). "الأدوار الحاسمة لبروتينات Xirp في التوصيل القلبي ومتغيراتها النادرة التي تم تحديدها في متلازمة الموت الليلي المفاجئ غير المبرر ومتلازمة بروجادا لدى سكان الهان الصينيين" . مجلة جمعية القلب الأمريكية . 7 (1) e006320. doi : 10.1161/JAHA.117.006320 . PMC 5778954. PMID 29306897 .   
  4. كابلين، ناتاشا جيه (يوليو 2003). "التداخل الرناوي كنهج للعلاج الجيني" . رأي الخبراء في العلاج البيولوجي . 3 (4): 575-586 . doi : 10.1517/14712598.3.4.575 . ISSN 1471-2598 . PMID 12831363 .  
  5. «جائزة نوبل في الطب أو علم وظائف الأعضاء لعام 2007» . مؤسسة نوبل . تم الاطلاع عليه بتاريخ 15 ديسمبر 2008 .
  6. هول ، برادفورد ؛ ليماي، أدفايت؛ كولكارني، أشوك ب. (2009-09-01). "نظرة عامة: توليد فئران معدلة جينيًا" . البروتوكولات الحالية في بيولوجيا الخلية . 44. وايلي - بلاك ويل: الوحدة 19.12 19.12.1–17. doi : 10.1002/0471143030.cb1912s44 . ISBN 978-0-471-14303-1. PMC 2782548 . PMID 19731224 .  
  7. 1 2 3 4 5 سانتياغو، يولاندا؛ تشان، إدموند؛ ليو، بي-كي؛ أورلاندو، سالفاتوري؛ تشانغ، لين؛ أورنوف، فيودور د.؛ هولمز، مايكل س.؛ غوشين، ديمتري؛ وايت، آدم (15 أبريل 2008). " تعطيل الجينات المستهدف في خلايا الثدييات باستخدام نوكليازات أصابع الزنك المُهندسة" . وقائع الأكاديمية الوطنية للعلوم . 105 (15): 5809-5814 . doi : 10.1073/pnas.0800940105 . ISSN 0027-8424 . PMC 2299223. PMID 18359850 .   
  8. إيجنر تي، غرانادو جيه، غيتون إم سي، هوه إيه، هولتورف إتش، لوشت جيه إم، وآخرون (2002). " ارتفاع وتيرة الانحرافات الظاهرية في نباتات فيزكوميتريلا باتنس المحولة بمكتبة تعطيل الجينات" . بي إم سي بيولوجيا النبات . 2 (1): 6. Bibcode : 2002BMCPB...2....6E . doi : 10.1186/1471-2229-2-6 . PMC 117800. PMID 12123528 .   
  9. 1 2 3 4 5 غاج، توماس؛ غيرسباخ، تشارلز أ.؛ بارباس، كارلوس ف. (2013). "طرق هندسة الجينوم القائمة على ZFN وTALEN وCRISPR/Cas" . اتجاهات في التكنولوجيا الحيوية . 31 (7): 397-405 . doi : 10.1016/j.tibtech.2013.04.004 . PMC 3694601. PMID 23664777 .  
  10. "الهروب من التعطيل الجيني بوساطة تقنية كريسبر-كاس: الحقائق والآليات والتطبيقات" . مجلة الخلية والعلوم الحيوية . 2024. تم الاطلاع عليه بتاريخ 29-04-2026 .
  11. 1 2 يونغ، ج. كيث؛ ساندر، جيفري د. (يناير 2013). "TALENs: تقنية واسعة التطبيق لتحرير الجينوم المستهدف" . مجلة Nature Reviews Molecular Cell Biology . 14 (1): 49-55 . doi : 10.1038/nrm3486 . ISSN 1471-0080 . PMC 3547402. PMID 23169466 .   
  12. "الهروب من التعطيل الجيني بوساطة تقنية كريسبر-كاس: الحقائق والآليات والتطبيقات" . مجلة الخلية والعلوم الحيوية . 2024. تم الاطلاع عليه بتاريخ 29-04-2026 .
  13. ^ ني، وي؛ تشياو، يونيو؛ هو، شينغوي. تشاو، شينكسيا؛ ريجوسكي، ميشا؛ يانغ، مين؛ بوليجايفا، إيرينا أ.؛ تشين ، تشوانغفو (2014/09/04). "التعطيل الجيني الفعال في الماعز باستخدام نظام كريسبر/كاس9" . بلوس واحد . 9 (9) هـ106718. بيب كود : 2014PLoSO...9j6718N . دوى : 10.1371/journal.pone.0106718 . ردمك 1932-6203 . بمك 4154755 . بميد 25188313 .   
  14. "طريقة كريسبر غير الجراحية الأولى من نوعها تقضي على جين القلق" . نيو أطلس . 21-06-2023 . تم الاطلاع عليه بتاريخ 18-01-2024 .
  15. لي، يونتشنغ؛ ساور، برايان (1 مارس 2001). "الحذف الجيني المشروط باستخدام إنزيم كري ريكومبيناز". التكنولوجيا الحيوية الجزيئية . 17 (3): 269-275 . doi : 10.1385/MB:17:3: 269 . ISSN 1073-6085 . PMID 11434315. S2CID 41578035 .   
  16. كوس، كلودين هـ. (يونيو 2004). "أساليب في علم التغذية: نظام Cre/loxP لإنشاء نماذج فئران معدلة وراثيًا ذات أنسجة محددة" . مراجعات التغذية . 62 (6): 243-246 . doi : 10.1111/j.1753-4887.2004.tb00046.x .
  17. تيان، شويينغ؛ تشو، بين (يناير 2021). "استراتيجيات لإعادة التركيب الموضعي بكفاءة عالية ودقة مكانية وزمانية فائقة" . مجلة الكيمياء البيولوجية . 296 100509. doi : 10.1016/j.jbc.2021.100509 . ISSN 0021-9258 . PMC 8050033. PMID 33676891 .   
  18. "الهروب من التعطيل الجيني بوساطة تقنية كريسبر-كاس: الحقائق والآليات والتطبيقات" . مجلة الخلية والعلوم الحيوية . 2024. تم الاطلاع عليه بتاريخ 29-04-2026 .
  19. "صفحات ويب حذف الخميرة" . مؤرشفة من الأصل في 29 سبتمبر 2012. تم الاطلاع عليها في 21 فبراير 2017 .